Определение резус фактора алгоритм

/ алгоритм 8 определение резус-фактора

Определение резус-фактора со стандартной сывороткой анти-резус.

1Вступительное слово: Мы проводим определение группы крови со стандартной сывороткой анти-резус в процедурном кабинете по назначению врача. На мне шапочка, очки, маска, халат, фартук, перчатки. Руки предварительно обработаны гигиеническим способом.

2 Оснащение:

  1. Стандартная сыворотка анти-резус

  2. Стерильная пробирка

  3. Исследуемая кровь ( в пробирке)

  4. Физиологический раствор ( в пробирке)

  5. Стерильные пипетки 2 шт

  6. Ёмкость с 3% раствором хлорамина

3 Техника манипуляции:

  1. Внести пипеткой в пробирку две капли сыворотки анти-резус

  2. Внести отдельной пипеткой одну каплю крови

  3. Вращать между ладонями 5 мин

  4. Внести 1 каплю физраствора в случае если наблюдается агглютинация.

  5. Встряхнуть пробирку, наблюдать агглютинацию 5 мин.

  6. Форма ответа: при определении резус фактора со стандартной сывороткой анти-резус..

  1. Агглютинация не наблюдается – резус фактор отрицательный

  2. Агглютинация наблюдается – резус фактор положительный

  1. После проведения манипуляции все использованные предметы замачиваются в емкости с трехпроцентным раствором хлорамина.

4 Возможные ошибки:

Грубые ошибки:

  1. Не использование средств защиты медработника.

  2. Нарушение пропорции сыворотки и крови 2:1

  3. Не соответствие картины агглютинации заключению о резус пренадлежности.

  4. Не продезинфицированы предметы контактировавшие с кровью

Не грубые ошибки:

  1. Время ожидания агглютинации менее 5 мин.

  2. Не внесен физраствор в случае наблюдаемой агглютинации.

  3. Выполнение манипуляции «на весу».

5 Критерии оценивания:

Сдал – отсутствие грубых ошибок, наличие не более двух не грубых ошибок.

Не сдал – наличие грубых ошибок, наличие более двух не грубых ошибок.

При совершении грубой ошибки преподаватель может попросить повторить соответствующий этап манипуляции. Если ошибка повторяется – не сдал. Допускается не более одного повторения.

StudFiles.ru

Определение резус фактора экспресс методом с помощью стандартного универсального реагента без подогрева в пробирке

Для определения резус-фактора может быть использована свежая не свернувшаяся кровь, взятая из пальца непосредственно перед исследованием, или консервированная, без всякой предварительной обработки, а также эритроциты из пробирки после образования сгустка и отстаивания сыворотки.

Техника определения.

- 1мл стандартного универсального реагента (антирезусная сыворотка группы AB(IV)+33% раствор полиглюкина);

-1мл исследуемой крови(эритроцитов)

На дно пробирки внести 1 каплю стандартного универсального реагента и 1 каплю исследуемой крови (или эритроцитов).

Содержимое пробирки перемешать встряхиванием и затем медленно поворачивать, наклоняя пробирку почти до горизонтали таким образом, чтобы содержимое растекалось по её стенкам. после 3-минутного покачивания ,

для исключения неспецифической агрегации эритроцитов в пробирку добавить 2-3мл физиологического раствора хлористого натрия и перемешать, не взбалтывая, путём 2-3-х кратного перевёртывания пробирки. Оценку производить визуально.

Оценка результата.

Резус-(+) -наличие агглютинации в виде крупных хлопьев из эритроцитов на фоне просветлённой жидкости .

Резус-(-) -отсутствие агглютинации (в пробирке гомогенно окрашенная жидкость).

Определение резус-фактора с помощью моноклонального реагента (цоликлон анти-d , анти-d супер).

Цоликлон анти-D супер выпускается во флаконах по 2,5 или 10 мл (1 мл содержит 10 доз). Срок хранения — 1 год в холодильнике при t 2~8 °С. Вскрытый флакон можно хранить в холодильнике в течение месяца в закрытом виде

Наносят большую каплю (около 0,1 мл) реагента на пластинку или планшет.

Рядом помещают маленькую каплю (0,01-0,05 мл) исследуемой крови и смешивают кровь с реагентом.

Реакция агглютинации начинает развиваться через 10-15 сек, четко выраженная агглютинация наступает через 30-60 сек.

Результаты реакции считывают через 3 мин.

Тарелку после смешивания реагента с кровью рекомендуется покачивать не сразу, а через 20-30 сек, что позволяет за это время развиться более полной крупнолепестковой агглютинации.

Метод агглютинации на чашках Петри.

- исследуемые эритроциты;

-две серии стандартных сывороток антирезус всех групп системы АВО;

-контрольные образцы резус-положительных и резус-отрицательных эритроцитов:

-водяная баня с постоянной температурой 46-48 С°

-чашки Петри


В чашку Петри наносят по 2 капли антирезусной сыворотки, слева - одной серии, справа - другой в 3 ряда для 3 исследований. В каждую серию прибавляют по 1капле эритроцитов (1.исследуемые, 2.контрольные Rh-положительные и 3.контрольные Rh-отрицательные). После смешивания (стеклянными палочками) сывороток в каждой точке с добавленными эритроцитами чашку помещают в водяную баню при t° 46—48° на 7—10 мин, после чего рассматривают в проходящем свете.

Наличие агглютинации свидетельствует о положительном результате, отсутствие ее - об отрицательном. Для контроля в этом методе используют заведомо Rh-отрицательные и Rh-положительные эритроциты.


Метод агглютинации с 10% желатином:


Реакция конглютинации с желатиной обычно проводится в пробирках емкостью 8—10 мл. В штатив устанавливают 2 ряда пробирок для двух различных серий стандартной сыворотки. В контрольные пробирки каждого ряда вводят по 1 капле стандартных резус-положительных и резус-отрицательных эритроцитов, в остальные пары пробирок — исследуемые эритроциты. Исследование можно проводить как с отмытыми, так и с неотмытыми эритроцитами.


Затем в каждую пробирку добавляют по одной капле подогретой до разжижения желатины (10% раствор) и по одной капле стандартной сыворотки. Содержимое пробирок смешивают путем встряхивания и помещают в водяную баню при t° 46—48° на 5 мин., по истечении которых в каждую пробирку доливают 5—8 мл подогретого до t° 46—48° физиологического раствора NaCl и рассматривают на свет, определяя наличие или отсутствие агглютинации (рис. 2).

Метод агглютинации в солевой среде.

При исследовании сывороткой, содержащей полные антитела, применяют метод агглютинации в солевой среде в маленьких пробирках (высотой 2—2,5 см, диаметром 0,5 — 0,6 см).

В штатив устанавливают 2 ряда пробирок (по количеству исследуемых образцов и по 2 для контроля), в которые вводится по 2 капли стандартной сыворотки и по 1 капле 2% взвеси эритроцитов, предварительно дважды отмытых физиологическим раствором NaCl.

Содержимое пробирок встряхивают и помещают в термостат при t° 37° на 1 час.

О резус-принадлежности судят по форме осадка, который рассматривают через лупу с 5—7-кратным увеличением над источником света, закрытым матовым стеклом. Результаты учитывают в зависимости от наличия или отсутствия агглютинации в исследуемых эритроцитах после проверки контрольных образцов.


studopedia.ru

Техника постановки пробы на резус совместимость с полиглюкином

Цель:определить совместимость донорской крови с кровью реципиента по резус принадлежности.

Показания:гемотрансфузия.

Приготовить:донорская кровь, 33% раствора полиглюкина, сыворотка крови реципиента, стеклянные палочки, пипетки, чашка Петри, шприц, игла, стерильные марлевые шарики, спирт, стерильный пинцет, стерильные перчатки, песочные часы, водяная баня.

Алгоритм действия:

  1. На дно пробирки внести 2 капли сыворотки больного, 1 каплю крови донора и 1 каплю 33% полиглюкина;
  2. Встряхнуть пробирку;
  3. Пробирку наклонить почти горизонтально и медленно поворачивать вокруг оси в течении 5 минут;
  4. Долить в пробирку 3-4 мл изотонического раствора хлорида натрия;
  5. Перемешать путем 2-3 кратного переворачивания пробирки ( не взбалтывать!);
  6. Посмотреть на свет и оценить результат;
  7. Если есть реакция агглютинации на фоне просветленной жидкости, то кровь переливать нельзя!;
  8. Если агглютинации не произошла, то реакция отрицательная и кровь переливать можно.

Примечание: температура воздуха должна быть в пределах 15- 25о С для профилактики ложной агглютинации.

Техника постановки биологической пробы

Цель: для определения совместимости крови донора и реципиента.

Показания:гемотрансфузия.

Приготовить:донорская кровь, систему для переливания крови, стерильные марлевые шарики, спирт, стерильный пинцет, стерильные перчатки.

Алгоритм действия:

  1. Перелить струйно 10-15 мл крови или кровезаменителей внутривенно;
  2. Закрыть систему на 3 минуты;
  3. Оценить состояние пациента;
  4. Перелить струйно 10-15 мл крови или кровезаменителей внутривенно;
  5. Закрыть систему на 3 минуты;
  6. Оценить состояние пациента;
  7. Перелить струйно 10-15 мл крови или кровезаменителей внутривенно;
  8. Оценить состояние пациента.

Примечание:При появлении болей в животе, груди, пояснице, рвоте, головной боли, одышке, тахикардии, сыпи на коже – кровь или кровезаменители вводить нельзя!

studopedia.ru

34. Оказание помощи врачу при наложении лейкопластырного скелетного вытяжения и вытяжения с помощью петли Глиссона

  1. Уложить пациента на горизонтальную поверхность кровати с системой блоков и грузом в изголовье

  1. Закрепить петлю Глиссона на голове либо из лейкопластыря сформировать петлю в основании черепа так, чтобы она фиксировалась у основания черепа (под подбородком и под большими затылочными буграми)

  1. Прикрепить груз весом 6 кг (вес груза зависит от вида повреждения и определяется врачом)

35. Применение эластичных бинтов и чулок на нижние конечности

Эластичный бинт

  1. Накладывать утром для предупреждения кровенаполнения и растяжения вен

  2. Придать ноге возвышенное положение под углом 45 град.

  3. Первые туры сделать у основания пальцев

  4. Далее по спирали бинтовать до паховой складки

  5. Туры должны оказывать умеренное давление на мягкие ткани; не должны вызывать неприятные ощущения; пальцы на стопе должны быть розовыми

36. Применение съемного бандажа, корсета

  1. Предназначением бандажа, корсета является фиксация части туловища в функциональном состоянии, предупреждение осложнений, связанных с анатомическими дефектами тела, приводящими в отсутствии бандажа или корсета к более грубым анатомическим и функциональным расстройствам

  1. Бандаж (корсет) должен содержаться в чистоте

  1. Пациент должен принять горизонтальное положение перед надеванием бандажа (корсета)

  1. При надевании не защемлять кожу; не допускать болезненных ощущений

Пуговицы и петли должны располагаться на лицевой стороне бандажа; лямки не должны «впиваться» в мягкие ткани.

  1. Пребывание в бандаже (корсете) не должно приводить к нарушениям дыхания и сердечной деятельности

37. Выявление признаков непригодности крови к переливанию, транспортирование крови из отделения переливания крови

  1. Непригодная кровь к переливанию, если:

- нарушены сроки и условия хранения крови

- флакон с кровью не имеет герметичности

- верхний слой во флаконе с кровью розовый (гемолиз эритроцитов)

- имеются капли жира, пленки, сгустки

- нечеткая граница между слоями крови во флаконе

  1. Хранится кровь в холодильнике при температуре 4 град; транспортировка в специальных контейнерах, нивелирующих изменяющийся температурный режим окружающей среды

38. Составление наборов и определение групповой принадлежности и резус-фактора крови

Определение группы крови с помощью цоликлонов анти-А и анти-В

  1. Приготовить тарелку, цоликлоны, стеклянные палочки, часы, исследуемую кровь

  1. Разделить тарелку полосой фломастера на 2 части

  1. Подписать

  1. Нанести на тарелку по одной капле цоликлона анти-А и анти-В

  1. Нанести на тарелку по одной капле крови (рядом с каплей цоликлона), каждая из которых в 10 раз меньше капли цоликлона

  1. Разными концами стеклянных палочек перемешать

  1. Покачивать в течение 2,5 минут

  1. Читать результаты реакции:

агглютинации нет – 1 группа крови

агглютинация в анти-А - 2 группа крови

агглютинация в анти-В - 3 группа крови

агглютинация в обеих каплях – 4 группа крови

Определение резус-фактора

  1. Приготовить пробирки, пипетки, физраствор (раствор хлорида натрия 0,9 %), универсальный реагент-антирезус, исследуемую кровь

  1. Нанести на стенку пробирки каплю универсального реагента-антирезуса и каплю крови, равных по размеру

  1. Покачивать 3 минуты

  1. Добавить 3 мл. физраствора

  1. Перевернуть, не встряхивая

  1. Читать результаты реакции:

Наличие агглютинации – исследуемая кровь резус-положительная

Отсутствие агглютинации – исследуемая кровь резус-отрицательная

StudFiles.ru

Читайте также